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#[[Conservação in vitro]] compreende a manutenção de amostras de germoplasma vegetal utilizando-se a técnica da cultura de tecidos in vitro, em condições controladas de temperatura, fotoperíodo e em meio de cultura que favoreça o crescimento lento dos propágulos. A manutenção de uma coleção in vitro é garantida pela adoção de um conjunto de medidas científicas, técnicas e operacioinais, a fim de evitar a deterioração das amostras por meio da transferência periódica dos propágulos vegetais para frascos contendo meio de cultura novo, em condições assépticas. A conservação in vitro é uma metodologia que permite a conservação a médio prazo de germoplasma vegetal.<ref>MATSUMOTO, K.; CARDOSO, L. D.; SANTOS, I. R. I.; Manual de Curadores de Germoplasma Vegetal; Caracterização in vitro; Embrapa Recursos Genéticos e Biotecnologia; Brasília-DF, 2010. (Série Documentos Embrapa 318) ISSN 0102-0110</ref>. Ver ''[[Conservação]]''.

Na Conservação in vitro são realizadas três atividades básicas:

#Introdução/estabelecimento do material vegetal;
#Monitoração/avaliação dos germoplasmas in vitro;
#Subcultivo/repicagem dos germoplasmas in vitro;

Fluxo das atividades: Os materiais coletados são introduzidos in vitro. Após estabelecimento são mantidos em câmara de conservação (10°C ou 20°C, depende da cultura). São realizadas monitorações periódicas para acompanhamento das condições de sobrevivência dos germoplasmas. Quando a monitoração indica condição de risco de morte das plantas,o material é subcultivado. Após subcultivo (repicagem), os germoplasmas são novamente colocados nas câmaras de conservação e o ciclo reinicia.

==Estabelecimento/Introdução de germoplasmas in vitro==

Os materiais a serem conservados podem chegar ao laboratório de cinco formas.
#sementes
#tubérculos
#plantas
#ramas
#in vitro

Quando chegam em sementes e tubérculos, já são desinfestadas,quando em plantas, são retirados as gemas apicais e laterais(explantes), quando em ramas são plantadas em casa de vegetação, e depois retirados os brotos(explantes) para desinfestar e colocar em meio de cultura,são desinfestadas com álcool 70% mais hipoclorito de sódio a 2,5%, por vinte minutos, e lavadas, dentro da câmara de fluxo laminar, por 03 
vezes, em seguida feita a introdução em meio de cultura especifico.
quando o material vem já in vitro, apenas são multiplicados e colocados em câmaras de crescimento 25°c. 
Existe uma planilha para este processo onde temos:
Anotação para estabelecimento/introdução in vitro
-Nome do técnico:
- Data da introdução:
-Espécie ou nome comum:
-BRA
-Tipo de material recebido: qual a forma do material recebido, se foi ramas, tubérculos, plantas,sementes ou in vitro.
-Data da introdução no Cenargen:
-Método de esterilização dos explantes:
-Meio de cultura usado:
- números de tubos feitos:
-Localidade: câmara
- temperatura: 25°c
-Luminosidade:
-Numero da grade:
-Observação:

==Monitoração dos acessos das coleção in vitro==

A monitoração consiste na avaliação, de diferentes aspectos pré-determinados, realizada em cada acesso da espécie, conforme a lista a seguir

*N° de tubos totais (atualmente estamos padronizando 10 tubos/acesso, mas esse valor ainda não está bem definido);
*N° de tubos contaminados por fungo;
*N° de tubos contaminados por bactérias;
*N° de tubos com planta morta mas crescida;
*N° de tubos com planta morta e não crescida;
*N° de tubos com planta viva mas sem crescimento;
*N° de tubos com planta com tamanho abaixo da metade do tubo;
*N° de tubos com planta com tamanho acima da metade do tubo, mas que ainda não atingiu o topo;
*N° de tubos com planta com tamanho maior que tubo, por já atingir o topo;
*N° de tubos com planta que apresenta brotação;
*N° de tubos com planta que apresenta alguma gema viva, mas todas as folhas estão mortas/amarelas;
*N° de tubos com planta que apresenta gemas laterais vivas, mas ápice morto;
*N° de tubos com raiz ausente;
*N° de tubos viáveis para próxima repicagem (planta apresenta alguma gema viva e nenhuma contaminação);
*N° de tubos contaminados, mas que podem ser viáveis caso necessário;
*N° de tubos descartados; 
*N° de tubos com planta que apresenta tubérculo (usado apenas na coleção de batata).

Levando em consideração esses aspectos é definido a última coluna: Acesso necessita de repicagem: sim(1) e não(0).
Nesse momento também classifica a urgência em que deve ocorrer essa repicagem. Essa classificação é feita através da localização; os materiais com condição muito crítica são colocados em grades identificadas com legenda URGn° e repicados imediatamente; os materiais que já precisa de repicagem, mas não apresenta condição crítica, são colocados em grades identificadas com legenda Rn° e repicados após os urgentes; caso exista materiais que não serão repicados são colocados em grades identificadas com legenda Nn°. No fim da repicagem renumeramos todas as grades na ordem em que foi repicadas.

==Subcultivo de germoplasmas in vitro==

O subcultivo ou repicagem é a troca de meio da planta.Após a monitoração, se ficou definido que necessita de subcultivo, faz-se o meio daquela cultura e prepara a câmara de fluxo laminar para efetuar a repicagem.Faz-se a anotação  de todo o material em ficha adequada. 
Onde é retirado a gema apical e colocado em um meio novo, fechando-o e identificando-o.Caso a planta não apresente gema apical, faz-se usando gemas laterais e brotações.Normalmente faz-se 10 tubos por acessos, exceto aquele que necessite multiplicação.
Depois de todos repicados são levados a câmara de conservação (20°c), ou a câmara de crescimento para que o material cresça mais rápido e mais forte.

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